1) Choix de l’éluant : Biblio + test influence concentration en sel ou type sel
2) Choix du canal (LC ou SC)
3) Choix de la quantité injectée
4) Choix du cross-flow
5) Vérificaction du taux de recouvrement
7) Mode hyperlayer
6) Mode sérique
8) Mode sérique et cross-flow
9) Mode sérique et spacer
Choix de l’éluant : Biblio + test influence concentration en sel ou type sel
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Exemples Influence du solvant
Liposomes
Fig. 2. Influence of the carrier solution components: a) PBS (blue line), b) HEPES (green line), c) HEPES+NaCl (red line), in the liposome AF4-MALS analysis (using Ls-CV). The fractogram shows the light-scattering signal at 90° of the entrapped liposomes versus the elution time. (Each color line shows the used carrier)
Exemples Influence du solvant
Fractogramme des caséines micellaires natives (concentration) avec l'utilisation de différents éluants
Micelles se déstabilisent quand on n’ajoute pas de calcium dans l’éluant
-> Ponts calciques qui maintiennent la micelle se dissocient
Exemples Influence du solvant
Liposomes
Quand sel=0mM : charge non écranté et Potentiel Zeta très fort et négatif -> objets très repoussés de la membrane, elution très rapide
Choix du canal (LC ou SC)
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Choix de la quantité injectée
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Influence de la quantité de matière injectée
Liposomes
Quand trop de matière injectée : Rayons + grands -> agrégation artificielle
Choix du cross-flow
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Influence du Cross-Flow
Liposomes
Influence du Cross-Flow
Liposomes
Quand objets très polydisperse : on préfère une exponentielle à une isoforce car pic “traîne” moins
Influence du Cross-Flow
Micelles de caséines + protéines sériques
Signal Refractomètre
Vérificaction du taux de recouvrement
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Il faut verifier que tout ce qu’on injecte sort du canal :
Soit on possède le dn/dc des échantillons dans l’éluant et dans ce cas astra calcule un taux de recouvrement en %
Soit nous ne connaissons pas le taux de recouvrement et nous injectons l’échantillon sans cross-flow ni focus pour obtenir une aire d’un pic total et comparer avec l’aire de notre méthode AF4
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Liposomes
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Si le taux de recouvrement est faible :
Mode sérique
Mode hyperlayer
Mode sérique et cross-flow
En mode stérique l’augmentation du cross-flow ne fait pas augmenter le temps de retention
Il le fait même diminuer.
Mode sérique et spacer
Le point d’inversion augmente avec le spacer
-> On privilégie un grand spacer pour rester en mode normal
Formation AF4 - Développement de méthode
Ressources pédagogiques
Created on January 28, 2026
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Formation AF4 - Développement de méthode
TOULOUSE FIELD-FLOW FRACTIONATION CENTER
1) Choix de l’éluant : Biblio + test influence concentration en sel ou type sel
2) Choix du canal (LC ou SC)
3) Choix de la quantité injectée
4) Choix du cross-flow
5) Vérificaction du taux de recouvrement
7) Mode hyperlayer
6) Mode sérique
8) Mode sérique et cross-flow
9) Mode sérique et spacer
Choix de l’éluant : Biblio + test influence concentration en sel ou type sel
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Exemples Influence du solvant
Liposomes
Fig. 2. Influence of the carrier solution components: a) PBS (blue line), b) HEPES (green line), c) HEPES+NaCl (red line), in the liposome AF4-MALS analysis (using Ls-CV). The fractogram shows the light-scattering signal at 90° of the entrapped liposomes versus the elution time. (Each color line shows the used carrier)
Exemples Influence du solvant
Fractogramme des caséines micellaires natives (concentration) avec l'utilisation de différents éluants
Micelles se déstabilisent quand on n’ajoute pas de calcium dans l’éluant -> Ponts calciques qui maintiennent la micelle se dissocient
Exemples Influence du solvant
Liposomes
Quand sel=0mM : charge non écranté et Potentiel Zeta très fort et négatif -> objets très repoussés de la membrane, elution très rapide
Choix du canal (LC ou SC)
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Choix de la quantité injectée
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Influence de la quantité de matière injectée
Liposomes
Quand trop de matière injectée : Rayons + grands -> agrégation artificielle
Choix du cross-flow
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Influence du Cross-Flow
Liposomes
Influence du Cross-Flow
Liposomes
Quand objets très polydisperse : on préfère une exponentielle à une isoforce car pic “traîne” moins
Influence du Cross-Flow
Micelles de caséines + protéines sériques
Signal Refractomètre
Vérificaction du taux de recouvrement
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Il faut verifier que tout ce qu’on injecte sort du canal :
Soit on possède le dn/dc des échantillons dans l’éluant et dans ce cas astra calcule un taux de recouvrement en %
Soit nous ne connaissons pas le taux de recouvrement et nous injectons l’échantillon sans cross-flow ni focus pour obtenir une aire d’un pic total et comparer avec l’aire de notre méthode AF4
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Liposomes
Étape développement de méthode sur échantillon inconnu
Si le taux de recouvrement est faible :
Mode sérique
Mode hyperlayer
Mode sérique et cross-flow
En mode stérique l’augmentation du cross-flow ne fait pas augmenter le temps de retention Il le fait même diminuer.
Mode sérique et spacer
Le point d’inversion augmente avec le spacer -> On privilégie un grand spacer pour rester en mode normal
Fin
Formation AF4 - Développement de méthode