PRESENTAción
TÉCNICAS DE BIOLOGÍA MOLECULAR EN BIOMEDICINA
Adrián Ortiz Gil y Mario Moreno Borrueco
Empezar
ÍNDICE
LIMITACIONES
¿QUÉ SON?
APLICACIONES DE LA TÉCNICA
PCR:BIOMEDICINA
TÉCNICAS MÁS USADAS
COMPARACIÓN DE DEGRADACIÓN
ELECTROFORESIS
PCR
PREGUNTAS
CONCEPTOS PREVIOS
ARTÍCULO
CONCLUSIONES
TÉCNICA CAPAGE
BIBLIOGRAFÍA
DIÁGNOSTICOS ESPECÍFICOS
¿Qué son las técnicas de biología molecular?
¿Qué son?
-Estudiar y manipular el ADN y ARN - Identificación, modificación y expresión de genes. .-Genética, biotecnología y medicina. -Su desarrollo ha permitido comprender los procesos moleculares de los organismos. - Contribuyen a resolver problemas biológicos y médicos mediante la investigación científica.
tecnicas de biología molecular más usadas
Técnicas mÁs usadas
CRISPR-CAS9
PCR
CLONACIÓNMOLECULAR
eLECTROFORESIS
PCR (reacción en cadena polimerasa)En biomedicina
PCR-based diagnostics for infectious diseases: uses, limitations, and future applications in acute-care settings
https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7106425/
Funcionamiento de la sonda TaqMan en la PCR Cuantitativa en Tiempo Real (qPCR)
CICLO BÁSICO
Diagnósticos Específicos de PCR: Desarrollo y Aplicaciones Clínicas
LIMITACIONES Y DESAFÍOS
4.1 Limitaciones técnicas Falsos positivos: debido a contaminación con ADN externo (por ejemplo “carry‐over” de reacciones anteriores), lo que requiere buenas prácticas de laboratorio. PMC Falsos negativos: pueden ocurrir si la muestra contiene pocos patógenos, si hay inhibidores en el extracto, o si la extracción de ADN/ARN no fue eficiente. Interpretación clínica de los resultados: detectar ADN no siempre significa infección activa (puede haber material residual, colonización, o microorganismos no viables). 4.2 Consideraciones de coste y logística PCR puede ser más cara que métodos tradicionales En entornos de urgencia, los equipos tradicionales de PCR pueden no estar disponibles “al pie de cama”, lo que limita el tiempo de respuesta.
EN EL ARTÍCULO TAMBIÉN SE HABLA SOBRE..
-PCR DE AMPLIO ESPECTRO-PERFILADO DE RESISTENCIA ANTIMICROBIANA (ENSAYOS DE CULTIVO PROLONGADO TARDA MUCHO) (POCA PRESISCIÓN) -APLICACIONES CLÍNICAS DE LA PCR EN RESITENCIA 1-RESITENCIA A LA METICILINA 2-RESITENCIA A LA RIFAMPICINA(TUBERCULOSIS) -RENTABILIDAD DE LA PCR
APLICADA A LA BIOMEDICINA.
Rapidez y reducción del tiempo diagnóstico Alta sensibilidad en la detección de material genético Detección de patógenos difíciles de cultivar Versatilidad de aplicaciones biomedicas
+ INFO
electroforesisen biomedicina
Basado en artículos científicos
Separation and Identification of Native Proteoglycans by Composite Agarose-Polyacrylamide Gel Electrophoresis andImmunoblotting
CONCEPTOS PREVIOS
Immunoblotting
ROTEOGLUCANOSLos proteoglucanos son macromoléculas formadas por una proteína central a la que se unen una o varias cadenas de glicosaminoglucanos.
Gel de agarosa-poliacrilamida
LA SDS-PAGE MUY ÚTIL...
PERO PRESENTA LIMITACIONES
TÉCNICA CAPAGE
Los sistemas electroforéticos continuos nativos usados difieren del SDS-PAGE en que utilizan un sistema tampón continuo tanto en el gel de separación (resolving gel) como en el tampón de corrida. En este caso no se emplea un detergente como el SDS; por lo tanto, las proteínas se separan en función de su carga y relación masa/carga nativas, y no en función del tamaño molecular. Además no se eliminan las cadenas de glicosaminoglicanos y se usan geles de porosidad abierta para permitir el paso de grandes proteoglucanos.
+ INFO
TÉCNICA CAPAGE
El procedimiento a seguir seria el siguiente:-Se prepara un gel compuesto (agarosa + poliacrilamida) con poros grandes. -Se carga la muestra de proteoglucanos nativos sin tratarlos con SDS ni agentes reductores. -Se aplica un campo eléctrico, y las moléculas migran según su carga y masa. -Luego, las bandas separadas pueden transferirse (blotting) a una membrana para análisis.
+ INFO
APLICACIONES DE LA TÉCNICA CAPAGE
- Análisis de proteoglucanos nativos de tejidos conectivos (cartílago, disco intervertebral, aorta, etc.).
- Estudio de fragmentación proteoglucánica generada por enzimas específicas.
- Identificación de subpoblaciones de proteoglucanos en muestras complejas.
COMPARACION DE DEGRADACIÓN EN ENFERMEDADES COMO
webgrafía
https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7106425/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36662471/ https://www.genome.gov/es/genetics-glossary/Electroforesis
GRACIAS POR VUESTRA ATENCIÓN
Es el momento de las preguntas.
En la SDS-PAGE estándar, el SDS desnaturaliza las proteínas y se une a ellas, confiriéndoles una carga neta negativa que impulsa su migración hacia el ánodo. El SDS se encuentra normalmente presente tanto en los tampones de muestra como en los tampones de corrida de este sistema, el cual se denomina sistema electroforético discontinuo, ya que los tampones tienen diferente composición en el gel de apilamiento (stacking) y en el gel de separación (resolving), donde las proteínas se apilan debido a la diferencia de movilidad y porosidad de los geles consiguiendo así la resolución de estas
Utiliza gráficos en tu presentación…
Las estadísticas transmiten profesionalidad y mayor sensación de veracidad. Un plus: intenta incluir siempre la fuente.
Es una técnica de laboratorio utilizada para detectar proteínas específicas dentro de una muestra compleja, como un extracto celular o tisular. Consiste en varios pasos:Separación de proteínas mediante electroforesis en gel, según su tamaño o carga. Transferencia de las proteínas separadas a una membrana (generalmente de nitrocelulosa o PVDF). Detección usando anticuerpos específicos que reconocen la proteína de interés; estos anticuerpos suelen estar marcados con una enzima o fluoróforo que permite visualizar la señal.
Utiliza gráficos en tu presentación…
Las estadísticas transmiten profesionalidad y mayor sensación de veracidad. Un plus: intenta incluir siempre la fuente.
Aunque la SDS-PAGE es una técnica muy útil y versátil, tiene limitaciones. Solo los proteoglucanos pequeños, con bajos niveles de sustitución de glicosaminoglucanos (GAG), pueden resolverse intactos en este sistema. La mayoría de los proteoglucanos son demasiado grandes para migrar o resolverse en SDS-PAGE, y los GAG pueden provocar manchas o difuminaciones en la resolución, lo que requiere la eliminación previa de los GAG mediante enzimas depolimerizadoras específicas, antes de analizar las proteínas centrales mediante SDS-PAGE e inmunoblotting.
TÉCNICAS DE BIOLOGÍA MOLECULAR EN BIOMEDICINA
adrianortizgil27112007
Created on October 31, 2025
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TÉCNICAS DE BIOLOGÍA MOLECULAR EN BIOMEDICINA
Adrián Ortiz Gil y Mario Moreno Borrueco
Empezar
ÍNDICE
LIMITACIONES
¿QUÉ SON?
APLICACIONES DE LA TÉCNICA
PCR:BIOMEDICINA
TÉCNICAS MÁS USADAS
COMPARACIÓN DE DEGRADACIÓN
ELECTROFORESIS
PCR
PREGUNTAS
CONCEPTOS PREVIOS
ARTÍCULO
CONCLUSIONES
TÉCNICA CAPAGE
BIBLIOGRAFÍA
DIÁGNOSTICOS ESPECÍFICOS
¿Qué son las técnicas de biología molecular?
¿Qué son?
-Estudiar y manipular el ADN y ARN - Identificación, modificación y expresión de genes. .-Genética, biotecnología y medicina. -Su desarrollo ha permitido comprender los procesos moleculares de los organismos. - Contribuyen a resolver problemas biológicos y médicos mediante la investigación científica.
tecnicas de biología molecular más usadas
Técnicas mÁs usadas
CRISPR-CAS9
PCR
CLONACIÓNMOLECULAR
eLECTROFORESIS
PCR (reacción en cadena polimerasa)En biomedicina
PCR-based diagnostics for infectious diseases: uses, limitations, and future applications in acute-care settings
https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7106425/
Funcionamiento de la sonda TaqMan en la PCR Cuantitativa en Tiempo Real (qPCR)
CICLO BÁSICO
Diagnósticos Específicos de PCR: Desarrollo y Aplicaciones Clínicas
LIMITACIONES Y DESAFÍOS
4.1 Limitaciones técnicas Falsos positivos: debido a contaminación con ADN externo (por ejemplo “carry‐over” de reacciones anteriores), lo que requiere buenas prácticas de laboratorio. PMC Falsos negativos: pueden ocurrir si la muestra contiene pocos patógenos, si hay inhibidores en el extracto, o si la extracción de ADN/ARN no fue eficiente. Interpretación clínica de los resultados: detectar ADN no siempre significa infección activa (puede haber material residual, colonización, o microorganismos no viables). 4.2 Consideraciones de coste y logística PCR puede ser más cara que métodos tradicionales En entornos de urgencia, los equipos tradicionales de PCR pueden no estar disponibles “al pie de cama”, lo que limita el tiempo de respuesta.
EN EL ARTÍCULO TAMBIÉN SE HABLA SOBRE..
-PCR DE AMPLIO ESPECTRO-PERFILADO DE RESISTENCIA ANTIMICROBIANA (ENSAYOS DE CULTIVO PROLONGADO TARDA MUCHO) (POCA PRESISCIÓN) -APLICACIONES CLÍNICAS DE LA PCR EN RESITENCIA 1-RESITENCIA A LA METICILINA 2-RESITENCIA A LA RIFAMPICINA(TUBERCULOSIS) -RENTABILIDAD DE LA PCR
APLICADA A LA BIOMEDICINA.
Rapidez y reducción del tiempo diagnóstico Alta sensibilidad en la detección de material genético Detección de patógenos difíciles de cultivar Versatilidad de aplicaciones biomedicas
+ INFO
electroforesisen biomedicina
Basado en artículos científicos
Separation and Identification of Native Proteoglycans by Composite Agarose-Polyacrylamide Gel Electrophoresis andImmunoblotting
CONCEPTOS PREVIOS
Immunoblotting
ROTEOGLUCANOSLos proteoglucanos son macromoléculas formadas por una proteína central a la que se unen una o varias cadenas de glicosaminoglucanos.
Gel de agarosa-poliacrilamida
LA SDS-PAGE MUY ÚTIL...
PERO PRESENTA LIMITACIONES
TÉCNICA CAPAGE
Los sistemas electroforéticos continuos nativos usados difieren del SDS-PAGE en que utilizan un sistema tampón continuo tanto en el gel de separación (resolving gel) como en el tampón de corrida. En este caso no se emplea un detergente como el SDS; por lo tanto, las proteínas se separan en función de su carga y relación masa/carga nativas, y no en función del tamaño molecular. Además no se eliminan las cadenas de glicosaminoglicanos y se usan geles de porosidad abierta para permitir el paso de grandes proteoglucanos.
+ INFO
TÉCNICA CAPAGE
El procedimiento a seguir seria el siguiente:-Se prepara un gel compuesto (agarosa + poliacrilamida) con poros grandes. -Se carga la muestra de proteoglucanos nativos sin tratarlos con SDS ni agentes reductores. -Se aplica un campo eléctrico, y las moléculas migran según su carga y masa. -Luego, las bandas separadas pueden transferirse (blotting) a una membrana para análisis.
+ INFO
APLICACIONES DE LA TÉCNICA CAPAGE
COMPARACION DE DEGRADACIÓN EN ENFERMEDADES COMO
webgrafía
https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7106425/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36662471/ https://www.genome.gov/es/genetics-glossary/Electroforesis
GRACIAS POR VUESTRA ATENCIÓN
Es el momento de las preguntas.
En la SDS-PAGE estándar, el SDS desnaturaliza las proteínas y se une a ellas, confiriéndoles una carga neta negativa que impulsa su migración hacia el ánodo. El SDS se encuentra normalmente presente tanto en los tampones de muestra como en los tampones de corrida de este sistema, el cual se denomina sistema electroforético discontinuo, ya que los tampones tienen diferente composición en el gel de apilamiento (stacking) y en el gel de separación (resolving), donde las proteínas se apilan debido a la diferencia de movilidad y porosidad de los geles consiguiendo así la resolución de estas
Utiliza gráficos en tu presentación…
Las estadísticas transmiten profesionalidad y mayor sensación de veracidad. Un plus: intenta incluir siempre la fuente.
Es una técnica de laboratorio utilizada para detectar proteínas específicas dentro de una muestra compleja, como un extracto celular o tisular. Consiste en varios pasos:Separación de proteínas mediante electroforesis en gel, según su tamaño o carga. Transferencia de las proteínas separadas a una membrana (generalmente de nitrocelulosa o PVDF). Detección usando anticuerpos específicos que reconocen la proteína de interés; estos anticuerpos suelen estar marcados con una enzima o fluoróforo que permite visualizar la señal.
Utiliza gráficos en tu presentación…
Las estadísticas transmiten profesionalidad y mayor sensación de veracidad. Un plus: intenta incluir siempre la fuente.
Aunque la SDS-PAGE es una técnica muy útil y versátil, tiene limitaciones. Solo los proteoglucanos pequeños, con bajos niveles de sustitución de glicosaminoglucanos (GAG), pueden resolverse intactos en este sistema. La mayoría de los proteoglucanos son demasiado grandes para migrar o resolverse en SDS-PAGE, y los GAG pueden provocar manchas o difuminaciones en la resolución, lo que requiere la eliminación previa de los GAG mediante enzimas depolimerizadoras específicas, antes de analizar las proteínas centrales mediante SDS-PAGE e inmunoblotting.