Carbunco Bacteridiano (presentación)

CARBUNCO BACTERIDIANO

Autor: Santos, L. A. A.

definición

El carbunco bacteridiano es una enfermedad infecciosa, bacteriana, zoonótica, aguda y sobreaguda de los rumiantes, que se manifiesta con fiebre, septicemia, muerte repentina y sangre espesa.

sinonimias

Antrax, carbunclo, grano malo, mal del bazo, pústula maligna, mal de la pajarilla, fiebre esplénica, barro esplénico y enfermedad de los cardadores de lana. *El bazo pierde la textura y al corte exuda la pulpa esplécnica que es espesa y negro-rojiza (barro esplécnico).

Agente etiológico

Bacillus anthracis, bacteria gram (+) con forma bacilar, aerobio y microaerófilo.

Los plásmidos pOX1 y pOX2 codifican la toxina y la cápsula respectivamente.

Tinción de gram en área del nódulo linfático que muestra abundantes organismos gram (+)

Patogenia

En la forma septicémica: las esporas ingeridas ingresan por intestino a la circulación sanguínea donde se convierten en la forma vegetativa de la bacteria, la cual encapsula. Dificultando la fagocitosis y permitiendo que el germen se multiplique. El bazo y los nódulos retienen en un principio las bacterias, pero pronto éstas superan su acción e invaden todo el organismo.

Patogenia

La toxina consta de tres factores. El factor I o edematógeno provoca vasodilatación y edemas, el factor II o antígeno protector permite la actuación del I y III, actuando como sistema de unión entre los receptores celulares y los factores tóxicos, pero por sí solo no tiene acción tóxica y el factor III o letal; produce shock, hipotensión, paro respiratorio y la muerte.

mecanismo de transmisión

Las especies más susceptibles ingieren las esporas con el pasto o el agua, los cuales se han contaminado con las eliminaciones (heces) y los cadáveres de los enfermos de carbunco (exudados post mortem). El hombre puede contraer carbunclo por inhalación, consumo y también por alguna herida en la piel.

signos clínicos

La presentación sobreaguda o aguda en bovinos y ovinos no muestra signos clínicos. En la presentación sobreaguda, la muerte sobreviene luego de 1 ó 2 horas de enfermedad. En la forma aguda demora el curso de la enfermedad hasta alrededor de 48 horas y después la muerte.

signos clínicos

En cerdos y caballos esta enfermedad está usualmente localizada y es de presentación crónica; se caracteriza frecuentemente por la aparición de inflamación alrededor de la garganta y la cabeza.

Signos en cerdos: 1. Período de incubación: 1-2 semanas 2. Inflamación edematosa de la garganta y el cuello 3. Inflamación y dificultades respiratorias 4. Muerte debido a asfixia o toxemia 5. No se observa septicemia

Edema submandibular en lechón

Signos en bovinos, ovinos, caprinos y equinos: Periodo de incubación es de 1 a 3 días. Forma septicémica: la presentación hiperaguda o fulminante ocurre al principio de los brotes. Es súbita y rápidamente mortal, se presenta fiebre, tambaleo repentino, disnea, caída súbita y muerte inmediata, presentándose hemorragias por las aberturas naturales.

En la presentación aguda y subaguda: hay fiebre (41-42ºC), excitación, luego depresión, cesa la rumia y la secreción láctea, aparecen edemas, temblores, cianosis, caída y muerte con hemorragias por las aberturas naturales. En los equinos el comienzo se acompaña de cólicos.

DiagnO´stico de la enfermedad

Diagnóstico clínico: los antecedentes de detección de animales muertos son cadáveres muy hinchados presentando salida de sangre oscura e incoagulable por aberturas naturales. En cerdos, signos de disnea por faringitis.

Diagnóstico de laboratorio se tomarán las siguientes muestras: A) Un hueso largo para realizar el aislamiento del agente de la médula ósea. B) Una muestra de sangre o mejor dos extendidos de sangre obtenidos de una vena superficial para tratar de observar el germen en su forma capsulada.

Húmero Fémur

Tinción de Gram: para ello se colorea un extendido de sangre con gram y otro con azul de metileno u otra coloración que permita ver cápsulas.(Color azul para los organimos y rodeados de una cápsula de color rosado pálido en el preparado teñido con azul de metileno).

Aislar el agente en cultivo puro: para lo cual se extrae material de la médula ósea, se emulsiona en solución fisiológica y se siembra en un medio sólido para aerobios (agar nutritivo, agar tripticasa-soya), un medio líquido para aerobios (caldo nutritivo, caldo triptosa-fosfato) y un medio líquido para anaerobios (medio tioglicolato o tarozzi) para descartar otras etiologías.

Prueba de precipitación de Áscoli, también llamada prueba de termoprecipitación de Ascoli o reacción de Áscoli-Valenti: investiga en los cadáveres la presencia de los antígenos polipeptídico y polisacárido del B. anthracis, lo cual, en caso de positividad, demuestra que la muerte se produjo por este agente.

DIAGNO´stico diferencial

La presentación sobreaguda (edematosa), puede confundirse con "edema maligno" (C. chauvoei). El agrandamiento del bazo que se observa puede referirse a la "babesiosis, anaplasmosis y leucosis". No es acompañada por la pérdida de su consistencia la cual se mantiene firme.

tratamiento

Penicilina, en la dosis para grandes animales de 11,000 UI x kg o sea 1,100,000 UI cada 100 kg por vía intramuscular. Le sigue las oxitetraciclinas, en dosis de 4 mg x kg de peso, que puede llevarse hasta 20 mg x kg.

Ejemplo de antibiótico (Penicilina)

tratamiento

Otros antibióticos que pueden usarse son ciprofloxacina, la clorotetraciclina, la eritromicina y el florfenicol.

Ejemplo de antibiótico (Florfenicol)

Tratamiento sintomático: Pueden utilizarse analépticos si se observa signos de insuficiencia respiratoria. Se vacunará a todos los animales tratados que sobrevivan los 4-7 días.

Ejemplo de vacuna viva (cepa Sterne)

control y prevención

Vacunación: la inmunización activa contra el carbunco se efectúa vacunando a los animales con una cepa viva de Bacillus anthracis incapaz de capsular en el organismo animal denominada cepa Sterne. La vacunación se realiza a los 3-4 meses y se repite anual o semestralmente.

control y prevención

Medidas higiénicas: disponer los cadáveres por enterramiento profundo, quemarlos en la fosa, cubrirlos con cal y taparlos, dejando 50 cm de tierra por arriba, para evitar que las esporas suban a la superficie por las lluvias. Los corrales de los mataderos o las áreas sospechadas deberán ser desinfectadas con una solución al 10% de NaOH o al 5% de formaldeído y luego limpiadas.

imágenes

Fagocitosis de las esporas de B. anthracis por macrófagos, determinada por microscopía de inmunofluorescencia.

imágenes

Células en el líquido pleural 10 días después de la hospitalización inicial que muestran tinción con antígeno granular para B. anthracis (ensayo inmunohistoquímico utilizando un anticuerpo monoclonal contra la cápsula, original aumento 250×).

Bloque celular preparado a partir de líquido pleural de un paciente con ántrax por inhalación que muestra bacilos y tinción con antígeno granular (ensayo inmunohistoquímico utilizando anticuerpos monoclonales contra la pared celular (a) y cápsula (b), aumentos originales 250× (a) y 157,5× (b).

N´ódulo linfático mediastínico edematoso y hemorrágico.

Presentación de hemorragia por la abertura nasal

Control de cadaver con sospecha de antrax

Bibliografías

Amasino C. F. (2017). Enfermedades infecciosas de los animales y zoonosis. La Plata, Buenos Aires, Argentina: Universidad Nacional de La Plata (EDULP).Gyles, C. L., Prescott, J. F., Songer, J. G., & Thoen, C. O. (2004). Pathogenesis of Bacterial Infections in Animals (Tercera ed.). Iowa, USA: Blackwell. Quinn, P., Markey, B. K., Leonard, F. C., Fitzpatrick, E. S., & Faninng, S. (2016). Concise Review of Veterinary Microbiology (Segunda ed.). New Delhi, India: Wiley Blackwell.