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Transcript

Universidad Autónoma de Nuevo LeónFacultad de Ciencias Biológicas Químico Bacteriólogo Parasitólogo Helmintología Dr. Francisco Javier Iruegas Buentello Etapa 1 Cuadro sinóptico Helmintos parásitos presentes en aves y peces

Grupo 241

Santana Martínez Alexia Italia 2127512

San Nicolás de los Garza, Nuevo León a 11 de septiembre de 2023

monogeneos

Ancyrocephalus spp Cleidodiscus spp

PECES

Gusanos planos con estructura de anclaje simple

trematodos

Clinostomum spp Centrocestus spp. Prosthogonimus spp.

AVES

Gusanos planos con ventosas

Bothriocephalus spp Corallobothrium spp

cestodos

Helmintos en aves y peces

PECES

Gusanos segmentados con escólex, con ventosas ventrales y dorsales

Davainea proglottina Raillietina cesticullus

AVES

Amoebotaenia sphenoidesHymenolepis carioca

Camallanus spp Spiroxys spp

PECES

nematodos

Gusanos cilíndricos con dimofimso sexual

Contraceum sppAscaridia galli

Trichostrongylus teius Heterakis gallinarum Ornithostrongylus quadriradiatus

AVES

acantocefálos

Neoechinorynchus spp. Pomphorhynchus spp.

Gusanos con probóscide con espinas en su extremo anterior.

PECES

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Ancyrocephalus spp.

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

monogenos en peces

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Ir a página principal

Cleidodiscus spp.

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Bothriocephalus spp.

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

cestodos en peces

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Ir a página principal

Corallobothrium spp.

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Camallanus spp.

cuadro clínico

ciclo biológico

control

prevención

nematodos en peces

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Ir a página principal

Spiroxys spp.

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Neoechinorynchus spp.

cuadro clínico

ciclo biológico

control

epizootiología

prevención

acantocefálos en peces

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Ir a página principal

Pomphorhynchus spp.

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Clinostomum spp.

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

TREMÁTODOS en AVES

morfología

patogenia

Centrocestus spp.

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

Ir a página principal

epizootiología

control

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Prosthogonimus spp.

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Davainea proglottina

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

cestodos en AVES

epizootiología

control

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

Ir a página principal

morfología

patogenia

Raillietina cesticullus

cuadro clínico

ciclo biológico

control

epizootiología

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Hymenolepis carioca

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

cestodos en AVES

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

Ir a página principal

morfología

patogenia

Amoebotaenia sphenoides

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Contraceum spp.

ciclo biológico

prevención

epizootiología

nematodos en AVES

taxonomía

Distribución geográfica

Ir a página principal

morfología

patogenia

Ascaridia galli

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Trichostrongylus tenuis

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

control

prevención

taxonomía

Distribución geográfica

nematodos en AVES

morfología

patogenia

Heterakis gallinarum

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

prevención

Ir a página principal

taxonomía

Distribución geográfica

morfología

patogenia

Ornithostrongylus quadriradiatus

cuadro clínico

ciclo biológico

diagnóstico

epizootiología

control

prevención

Literatura consultada

Ahmad, F., Fazili, K.M., Sofi, O.M., Sheikh, B.A., & Sofi, T.A. (2018). Distribución y patología causada por Bothriocephalus acheilognathi, Yamaguti 1934 (Cestoda: Bothriocephalidae). Revisión bibliográfica. Revista Veterinaria, 29(2), 142-149. https://revistas.unne.edu.ar/index.php/vet/article/view/3283/2933 Al-ibrahimi, L. A., Khaled, & Hind. (2017). Detection of Endoparasites and Hemathological parameters changes in (Gallinula chloropus). Research Gate. Recuperado de https://www.researchgate.net/publication/328838780_Detection_of_Endoparasites_and_Hemathological_parameters_changes_in_Gallinula_chloropus Álvarez, N. (2020). Metazoarios parásitos en tilapia y en bagre. Universidad Michoacana De San Nicolas De Hidalgo, 24–25. http://bibliotecavirtual.dgb.umich.mx:8083/jspui/bitstream/DGB_UMICH/1823/1/FB-M-2020-0405.pdf Angeles Azucena. (2015). CESTODOSIS DE POLLOS, PAVOS, PATOS, GANSOS Y PALOMAS. https://slideplayer.es/slide/3936633/ Bush, A., Lafferty, K. D., Lotz, J. M., Shostak, M. W. (1997). Parasitology meets ecology on its own terms. Journal of Parasitology, 83: 575-583 Butcher, G., Miles, R. (2012). Intestinal Parasites in Backyard Chicken Flocks. University of Florida IFAS Extension. Caballero, E. Parásitos y enfermedades del bagre (2.a ed.). SEPESCA - Gobierno de México. Caffara, M. S. Locke, A., Gustinelli, A., Marcogliese, D. J., Fioravanti, M. L. (2011). Morphological and molecular differentiation of Clinstomum complanatum and Clinostomum marginatum (Digenea: Clinostomidae) metacercariae and adults. Journay of Parasitology, 97: 884-891.

Choc, L., Wer, R., Figueroa, L., & Rodríguez-Zea, M. (2019). Neoechinorhynchus sp. en el intestino de peces bagres o kishkes. Ciencia Animal, 23(1), 62-72. Garcia I. (2009) Manual de laboratorio de Parasitología 9. Cestodos. Facultad de Ciencias Biológicas. Universidad Complutense de Madrid Gottdenker, N. L., Walsh, T., Vargas, H., Merkel, J., Jiménez-Uzcátegui, G. J., Miler, R. E., Dailey, M. & Parker, P. (2005). Assesing the risks of introduced chickens and their pathogens to native birds ion the Galápagos Archipielago. Biological Conservation 126, 429-439. Heneberg, P., Sitjo, J., & Bizos, J. (2015). Taxonomia integradora de platelmintos parásitos de Europa central de la familia Prosthonimidae Luhe, 1909 (Trematoda: Plagiorchiida). Recuperado de https://sciencedirect.com/science(article(abs/pii/S138357691500032X Jiménez Bahena, O., Pena Hernández, M., Remirez Martínez, C., Tapia Osorio, M., Guzman Granados, L. E., Montes Bara, R., Castrejon Ramos, A. J., Álvarez Jasso, M., & Benitez Ocampo, A. (2010). Guía para la identificación de parásitos y enfermedades en peces de ornato. Inapesca.gob.mx. Recuperado 14 de agosto de 2023, de https://n9.cl/9q51r Langer, S., Ahmad, F., & Un-Nissa, N. (2017). Histolopathological Alterations in the Intestines of Labeo rohita Infected with Acanthocephalan Parasite Neoechinorhynchus sp. Biosciences, Biotechnology Research Asia, 14(4), 1331-1336. Mancini, M. A., Biole, F. G., Salinas, V. H., Guagliardo, S. E., Tanzola, R. D., & Morra, G. (2014). Prevalence, intensity and ecological aspects of Contraceum sp. (Nematode: anisakidae) in freshwater fish of Argentina. Neotropical Helminthology, 8(1): 111-122. Martínez, R. D. B., Cordero, H. P., Velásquez, J. C., Bolaño, C. R., Otero, G., Monsalve, S., Mestra, A., & Chacón-Pacheco, J. (2021c). Parásitos gastrointestinales de Hicoteas trachemys callirostris (Emydidae) traficadas ilegalmente en Córdoba, Colombia. Revista de investigaciones veterinarias del Perú, 32(2). Pardo Cobas Enrique. (2007). PARASITOLOGIA VETERINARIA II (2.a ed.). UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA FACULTAD DE CIENCIA ANIMAL.

Morfología
  • Cuentan con opistohaptor en su porción posterior
  • 2 pares de anclas
  • 7 pares de ganchos marginales
  • También cuenta con apertura vaginal, ovarios y testículos en la porción media de su cuerpo.
  • Manchas oculares en extremos anterior
Morfología
  • Probóscide retráctil

Armada con ganchos que les permiten anclarse con seguridad en el intestino del hospedador.

Morfología
  • A y B: Extremo anterior de la hembra
  • C: Cápsula nucal
  • E: Cola de hembra
  • F: Organo sensitivo
  • H e I: Extremo posterior del macho
  • J, K: Cola de macho
Morfología
  • Escólex con cuatro ventosas
  • Debajo tiene a su proglótide inmadura
  • En su cuerpo medio se ven los poros genitales
  • En la proglótide madura estan los testiculos, ovarios posterior y canales excretores
Morfología
  • Cuenta con una ventosa oral y ventosa ventral
Botriocefalosis

Las especies se adhieren a la pared intestinal por su botria, engullendo los pliegues intestinales. Una acumulación de tenias en esta área conduce al bloqueo del tracto digestivo que relaja a la pared intestinal y conduce a la perforación.

  • Adelgazamiento marcado del intestino, con formación de hoyos en pared
  • Compresión de la mucosa
  • Hemorragia localizada
Cestodo maduro
  • Róstelo con una sola corona de ganchos
  • Ventosas desarmadas
Morfología
  • hp: Haptor o anclas marginales
  • pe: Pene
  • ap: Pieza accesoria
  • También cuenta con apertura vaginal, ovarios y testículos en la porción media de su cuerpo.

Ascaridiasis

Irritación y daño intestinalDaño al sistema respiratorio Debilitamiento general

Morfología
  • 12 a 14 ganchos en su rostelo
  • El útero es saquiforme
  • 20 proglótides
  • Ventosas no armadas

Inflamación del oviductoEn la bolsa Fabricii provocan:

  • Elevaciones poliposas
  • Exfoliación epitelial
  • Degeneración
  • Hiperplasia

Contracecosis

Su nivel de afección depende de la etapa en la que se encuentran las larvas

Las larvas rompen la cubierta protectora provocando heridas para los microorganismos oportunistas

Clinostomiasis
Morfología
  • Cuerpo alargado de 0.240 a 344 mm y 0.122 mm de ancho.
  • Quiste ovalado y trasnparente
  • Su cuerpo es estrecho en la parte anterior, enteramente cubierto de espinas pequeñas.
  • Ventosa oral subterminal con 2 coronas con 16 espinas c/u
  • Las larvas en mucosa ejercen acción expoliatriz.
  • Transporta a Histomonas meleagridis dentro del hospedero

Raillietinosis

  • Degeneración de las células epiteliales
  • Enteritis
  • Infiltración de linfocitos por macrófagos
Morfología
  • Dimorfismo sexual
  • Cuenta con esófago y ano
Morfología
  • Lesiones hiperémicas localizadas
  • Excresiones de un contenido mucoso amarillento del ano
  • Tifilitis
  • Petequias
  • Colitis
  • Irritación en mucosa intestinal
  • Enteritis del intestino delgado
  • Al infectar los bronquios y sacos aereos, ya que sus larvas se desarrollan en este sitio, conlleva a problemas respiratorios.
  • Deshilachamiento de aletas
  • Pérdida del apetito
  • Comezón
Huevo

Cestodo adulto

Morfología
  • Tamaño de 2.5-5.5 mm de largo
  • Quistes esféricos grandes y de color amarillo
  • Cuerpo alargado y elíptico
  • Ventosa oral pequeña y subterminal
Morfología
  • sc: Scólex
  • b: Surcos
  • Cuenta con proglotide inmaduro y maduro
  • Crecimiento hacia abajo
Morfología
  • Tiene un estómago dividido: parte anterior muscular y parte glandular posterior
  • Esófago bien desarrollado
  • Fasmidios en parte posterior
  • La larva presenta una boca con labios trilobulados

Metacercarios

Huevo con miracidio que no eclosiona en agua

2° Huesped intermediario

1er huésped intermediario

Cercarios de cola corta

Cestodo maduro

An: Ano Dp: Proceso Va: Area de la vulva U: Utero O: Oviyector en pares Sp: Esfínter

Huevo

Al tener un gran número de cestodos en el duodeno, ocurre una penetración al interior de las vellosidades intestinales. Lo cual puede causar enteritis hemorrágica

Centrosestiasis

Los colgajos operculares se ensanchan debido a los tejidos branquiales distorsionados. Las branquias pueden presionar contra la pared de la faringe y el colgajo opercular, produciendo un color rojo intenso visible externamente.

Ciclo monoxénico

  • Mide entre 7-15 mm
  • Poseen 3 labios
Posee espículas, cloaca, papilas precloacales y postcloacales en su porción posterior En su porción anterior se encuentra la boca, esófago, valvula e intestino